Kupfer ist ein Spurenelement, das für viele Körperfunktionen wichtig ist. Vor allem für die Ausreifung des Nervensystems von Ungeborenen im Mutterleib spielt Kupfer eine wichtige Rolle.

Leidet das Muttertier unter einem Mangel an diesem Spurenelement, ist die Ausbildung von Hirn und Rückenmarkscheide des Lammes oder Kitzes beeinträchtigt, es entstehen regelrechte Hohlräume im Hirn, die Folge sind schwerste zentralnervöse Störungen bei den neugeborenen Lämmern. Diese Störungen bei den Lämmern können sich bei Kupfermangel aber auch erst in den ersten Lebenswochen entwickeln, es entsteht der sogenannte Sway-back (enzootische Ataxie).

KUPFER IST ABER AUCH ALS BAUSTEIN WICHTIGER ENZYME ZUR BILDUNG UND AUSREIFUNG DER ROTEN BLUTKÖRPERCHEN UND FÜR DEN EISENSTOFFWECHSEL SOWIE FÜR DIE REIFUNG DER WEISSEN BLUTKÖRPERCHEN NOTWENDIG.

Auf eine ausreichende Zufuhr von Kupfer ist daher zu sorgen, um Abmagerung, Blutarmut und Infektanfälligkeit sowie Gehirnschäden bei den Tieren zu verhindern.

Dabei ist jedoch zu beachten, dass besonders Schafe eine nur geringe Toleranz für Kupfer aufweisen. Schafe benötigen im Gegensatz zur Ziege nur wenig Kupfer, ein zuviel an Kupfer führt rasch zu Vergiftungserscheinungen. Das zuviel aufgenommene Kupfer wird über Monate in der Leber der Tiere gespeichert und häuft sich in diesem Organ an. Bei Schafen beobachtet man deshalb Kupfermangel nur selten, viel häufiger treten Schäden durch Kupfervergiftung auf, v.a. wenn falsche Mineralstoffmischungen (z.B. für Rinder oder Schweine) verfüttert werden.

In Österreich sind seit 2002 mit der Einführung des Tierarzneimittelkontrollgesetzes eine Vielzahl an neuen Vorschriften zur Arzneimittelanwendung an Nutztieren erlassen worden.

Gibt es noch Möglichkeiten, dass ich als Bauer Arzneimittel an meinen Schafen und Ziegen anwenden darf?

Auf den Tierhalter kommen immer mehr Gesetze und Verordnungen zu, deren Informationsflut oft Unsicherheiten bei Nichtinformierten aufkommen lassen, was denn an Behandlungsmöglichkeiten kranker Tiere überhaupt noch legal ist.

Zusammenfassend lässt sich sagen, dass durch das Tierarzneimittelkontrollgesetz, das 2002 erlassen wurde, endlich Rechtssicherheit in der Anwendung von Arzneimitteln an Tieren, die zur Lebensmittelgewinnung dienen sollen, herrscht. Die dem Tierarzneimittelkontrollgesetz nachgelagerten Verordnungen (z.B. Tierarzneimittelanwendungsverordnung und deren Änderungsverordnungen) regeln die Anwendungsmöglichkeiten durch den Tierhalter sehr genau.

Es ist nun gesetzlich erlaubt, dass im Rahmen von Betreuungsverhältnissen Tierarzneimittel vom Tierarzt dem Bauern zur Anwendung an seinen Schafen und Ziegen überlassen werden. Dies darf aber nur unter tierärztlicher Anleitung erfolgen und es muss auch eine tierärztliche Diagnose gestellt werden.

Außerhalb eines Betreuungsverhältnisses im Rahmen des Tiergesundheitsdienstes dürfen vom Tierhalter nur mehr Tierarzneimittel selbst angewandt werden, die laut Anwendungsverordnung außerhalb des TGD erlaubt sind – die sogenannten “NE”-Arzneimittel. “NE” bedeutet, dass die Anwendung dieser Medikamente nicht eingeschränkt ist.

Trotzdem dürfen diese Präparate nur dann vom Bauern angewendet werden, wenn diese von einem Tierarzt verschrieben wurden, der Abgabebeleg am Betrieb aufbewahrt wird und die Anwendung beim jeweiligen Tier entsprechend dokumentiert wird.

Wie ziehe ich Kotproben richtig?

Für Parasitologische Untersuchungen ist die richtige Gewinnung von Kotproben wesentlich, um falsch negative Befunde zu vermeiden und zu exakten Diagnosen zu kommen.

Woher entnehme ich die Kotprobe?

Kotproben sollten wenn möglich immer direkt aus dem After entnommen werden. Unmittelbar abgesetzter Kot kann vom Boden ausnahmsweise aufgenommen werden. Kotproben vom Mistplatz oder von der Weide oder bereits seit längerer Zeit abgesetzter Kot aus der Einstreu führen unweigerlich zu falschen Ergebnissen, weil schon zuviel Zeit vergangen ist und sich die Parasiteneier bereits zu Larven weiterentwickelt haben, die aus dem Kot ausgewandert sind. Ein falsch-negativer Befund ist die Folge – die Kotuntersuchung somit wertlos geworden!

Welche Tiere sind geeignet, um einen möglichst aussagekräftigen Befund zu erhalten?

Vorzugsweise zieht man die Kotprobe von Lämmern/Kitzen bzw. Jungtieren mit Durchfall bzw. von Jährlingen, die immer wieder Durchfall zeigen, sich in schlechtem Nährzustand befinden oder bereits deutlichere Anzeichen für einen Parasitenbefall (z.B. Flaschenhals, Blutarmut) zeigen. Kot von älteren Tieren ist oft nicht aussagekräftig, weil die Tiere viel weniger bis gar keine Parasiteneier ausscheiden.

Wann ist ein guter Zeitpunkt für eine Kotprobenuntersuchung?

Im Frühjahr bis zum Herbst, bei Leberegelverdacht auch im Spätherbst oder Frühwinter. Faustregel: die meisten Parasiten begeben sich in eine Art Winterschlaf, d.h. im Winter werden weniger Eier ausgeschieden als im Sommer, wenn die Umweltbedingungen der Parasiten besser sind. Bei vermehrten Durchfällen mit Verdacht auf ein parasitäres Geschehen ist eine Kotprobe in jedem Fall VOR der Behandlung angezeigt. NACH der Behandlung (ca. 10 Tage danach) hat sich die Ziehung von Kotproben und die Untersuchung des Kots auf Parasiten bestens bewährt.

So kann man nämlich den Behandlungserfolg bzw. die Wirksamkeit des eingesetzten Präparates unmittelbar überprüft werden und so frühzeitig erkannt werden, wenn bereits Resistenzen vorhanden sind. Ein Wechsel des Medikamentes ist somit ohne größere Tierverluste noch rechtzeitig möglich.

Wie entnehme ich die Kotprobe?

Am besten nimmt man einen Plastikhandschuh, reizt den After mit streichelnden Bewegungen, um Kotabsatz zu provozieren und fängt den Kot mit der Handfläche auf, stülpt den Handschuh um und kann die Kotprobe sogleich mit einem Knoten verschließen. Setzt das Tier nicht freiwillig Kot ab, hat sich v.a. bei Schafen bewährt, die Nase und das Maul solange zuzuhalten, bis das Tier aus Atemnot in Panik gerät – Kot und Harn wird meist unmittelbar danach abgesetzt (Helfer nötig!).

Welche Menge an Kot ist notwendig?

Ca. 20 – 40 g reichen (Faustregel: eine Portion in der Größe von 2-3 Walnüssen) für eine vollständige Parasitenuntersuchung auf Magen-Darmwürmer, Lungenwürmer und sogar Leberegel aus. Lieber etwas zu viel von einem verdächtigen Tier einsenden, als zuwenig! Für die Lungenwurmdiagnostik benötigt man mehr Kotmenge!

Sind Misch- und Sammelkotproben sinnvoll?

Bei Verdachtsfällen ist es sinnvoller, Einzelkotproben einzusenden, um einen Behandlungserfolg zu überprüfen, können Sammelkotproben genause eingeschickt werden. Zu beachten ist immer, dass bei Sammelkotproben eine Verdünnung eventuell positiver Tiere mit dem Kot negativer Tiere zustandekommt und das Gesamtergebnis so verfälscht werden kann. Wird ein mittelgradiger Parasitenbefall bei Einsenden einer Mischprobe festgestellt, ist dies höher zu bewerten, als ein Einzelkotprobenbefund.

Wie verschicke ich die Kotprobe richtig?

Es ist immer ein Begleitschreiben beizulegen mit Angaben über das Alter und Geschlecht des Tieres, die Tierart bzw. Rasse ist anzugeben und die sonstigen Auffälligkeiten (z.B.: Tier hat seit 3 Tagen Durchfall, …). Der Besitzer ist anzuführen (Name, Anschrift), sowie auf welche Parameter untersucht werden soll. Kotproben dürfen nur vom Betreuungstierarzt eingeschickt werden. Die Veterinärmedizinische Universität nimmt nur noch Proben von Tierärzten entgegen. Kotproben sind im Einvernehmen mit dem Betreuungstierarzt einzusenden bzw. die Behandlungsstrategie mit diesem zu vereinbaren.

Kotproben müssen gut verpackt eingeschickt werden (am besten in einem Plastikgefäß mit gut schließbaren Decken oder in einem verknoteten Rektalhandschuh oder Plastiksack. Ausgetrocknete Kotproben sind wertlos! Die genaue Vorgangsweise erklärt Ihr Betreuungstierarzt.

Bei Problemen mit der Eutergesundheit ist es notwendig, neben der regelmäßigen Durchführung von Schalmtests auch eine Erregerdifferenzierung durchführen zu lassen.

Bei Schafen ist der Schalmtest sehr aufschlussreich und in etwa gleich aussagekräftig wie bei Rindern. Bei Ziegen können keine genauen Aussagen getroffen werden, da Ziegenmilch natürlicher weise eine hohe Anzahl von Zellen enthält und der Schalmtest falsch positiv aufscheint. Zellgehalte von mehreren Hunderttausend sind bei Ziegen keine Seltenheit – und kommen in völlig gesunden Eutern vor. Bei Schafen muss bereits die Schlierenbildung beim Schalmtest mit Vorsicht genossen werden und ist ein deutlicher Hinweis darauf, dass zumindest eine Sekretionsstörung vorliegt.

Bei Auftreten von Eutererkrankungen ist es besonders wichtig, zu einer Herdendiagnose zu kommen, um bei weiteren Erkrankungen möglichst rasch das richtige Medikament einsetzen zu können und auch prophylaktisch Maßnahmen setzen zu können.

Um den Krankheitserreger identifizieren zu können, ist die Einsendung einer aseptischen Milchprobe wichtig, nicht nur bei chronischen Verläufen, sondern auch im akuten Geschehen. Parallel zur Untersuchung auf die Keime ist es sinnvoll, ein Antibiogramm durchführen zu lassen, um das am besten wirksame Medikament zur Behandlung herauszufinden und die Therapie möglichst gezielt ansetzen zu können.

Auf besondere Hygiene ist bei der Entnahme zu achten! Viele der Proben sind im Labor praktisch nicht mehr zu verwenden, weil Schmutzkeime in das Gefäß gelangt sind und die Schmutzkeime den eigentlichen Erreger im Labor überwuchern – ein nicht mehr aussagekräftiges Ergebnis ist die Folge, die in den meisten Fällen völlig unzufriedenstellend für den Betrieb ist.

Vielfach hat sich genau aus diesem Grund der Irrglaube entwickelt, Milchproben sind unnötig und kosten nur Geld. Gezielt eingesetzt bieten sie eine ausgezeichnete Diagnose für die Herde – auch wenn sie vielleicht für das akut erkrankte Einzeltier nicht mehr ausschlaggebend ist. Bei weiteren Erkrankungen profitiert der Betrieb von einem Screening der Herde.

Wie bereite ich eine aseptische Milchprobe vor?

Zu Beginn ist darauf zu achten, dass man einen sauberen Stallmantel mit langen Ärmeln überzieht. Die Probensets sind vom Tierarzt zu besorgen und trocken und sauber in einem Schrank griffbereit aufzubewahren. Für den Notfall sollte eine versiegelte Packung auf Lager liegen bzw. so rasch als möglich besorgt werden.

Folgende Geräte und Utensilien sind vor der Entnahme bereitzuhalten:

• 1 Flasche mit ca. 70 %igen Alkohol
• Wattebauschen (lose Watte geht besser als Wattepads)
• Statt Alkohol und Watte können auch Einweg-Desinfektionstücher genommen werden
• 1 Packung mit den Probenröhrchen
• Arbeitsmantel (saubere Schutzbekleidung)
• 1 Blatt Papier mit Tabelle der zu untersuchenden Tiere (bei Herdenuntersuchung) – eingeteilt in linke und rechte Hälfte – Platz für Schalmtestergebnis einrechnen + Schreibzeug
• Euterpapier (Einwegtücher)
• Schalmreagenz + Schalmtestplatte
• 1 Eimer mit warmen Wasser zum Reinigen des Schalmtests nach Gebrauch
• Handtuch, Seife zum Händereinigen

Die Probengefäße sind im Vorhinein zu beschriften und entsprechend der Beschriftung heranzuziehen, um Verwechslungen auszuschließen und während der Entnahme möglichst viel Schreibarbeit zu vermeiden.

Wie führe ich die aseptische Milchprobenentnahme durch?

Folgende Reihenfolge zur Milchprobenentnahme muss beachtet werden, um aussagekräftige und möglichst saubere Proben zu erhalten:

1.) Euter und Zitzen mit Einwegtuch trocken säubern – eventuell überstehende bzw. im Weg stehende Wolle vorher auszupfen
2.) Schalmtest auf beideen Euterhälften durchführen
3.) Auswertung des Schalmtests in Tabelle eintragen (Helfer)
4.) Hände reinigen und gut abtrocknen
5.) Wattebausch in die Hand nehmen, Alkohol großzügig darüberleeren, ohne den Wattebausch mit der Flasche zu berühren
6.) Steht das Tier mit dem Kopf nach links: zuerst die rechte Zitze reinigen (Faustregel: zuerst die weiter entfernte Zitze reinigen, danach die nahe). Mit schraubenzieherartigen Bewegungen die Zitzenkuppe fest einreiben
7.) Wattebausch umdrehen und mit der noch sauberen Seite nochmals mit drehenden Bewegungen die Zitze gut abreiben – fest andrücken, damit der Alkohol gut einwirken kann, die Kuppenunterseite am Ende nochmals drehend abreiben, um alle Schmutzrückstände zu beseitigen
8.) Vorgang ab 5. wiederholen, die näher liegende Zitze ebenfalls reinigen
9.) Erstes Probengefäß nehmen, Verschlusskappe lockern – NICHT abnehmen
10.) Mit Probengefäß zum Euter neigen, Probengefäß dabei mit Öffnungsseite Richtung Boden halten (befinden sich Stabilisator-Kügelchen darin – lediglich waagrecht halten) – Probengefäß dabei mit Zeigefinger und Daumen halten
11.) Die Milchentnahme erfolgt in umgekehrter Reihenfolge wie die Säuberung der Zitzen – also zuerst die nähere Zitze, danach die weiter entfernte Zitze melken.
12.) Jetzt den Deckel mit der freien Hand abnehmen und zwischen Zeigefinger und Mittelfinger mit der Öffnung nach vorne einklemmen – Probengefäß dabei maximal waagrecht halten (es darf nicht möglich sein, dass von oben Schmutz ins Gefäß fällt)
13.) Zitze umfassen und einen dicken Strahl Milch in die Öffnung des Röhrchens melken – dabei darf das Röhrchen keinesfalls die Zitze oder ander Euterteile oder das Vlies berühren – Abstand halten
14.) Unmittelbar danach: Decken an Außenseite nehmen und Gefäß verschließen.
15.) Vorgang mit zweiter Zitze wiederholen

Weshalb ist diese Vorgangsweise so wichtig?

Es ist wichtig, dass bereits desinfizierte Zitzen nicht irrtümlich noch einmal mit dem schmutzigen Handrücken berührt werden. Deshalb ist zuerst die weiter entfernte Zitze zu desinfizieren, danach die näher liegende – die Probenentnahme genau umgekehrt durchzuführen.

Die Probengefäße sollten deshalb eher nach unten gehalten werden, damit keine Staubpartikel ins Gefäß fallen können. Der Abstand beim ERmelken der Probe ist deshalb wichtig, um Verschmutzungen und Keimeinträge mit Schmutzkeimen am Rand des Gefäßes zu verhindern.

Die Verschlusskappe darf nur außen angefasst werden, keinesfalls darf auf die Innenseite gegriffen werden – ansonsten ist wieder die Gefahr gegeben, dass Schmutzkeime das Probenergebnis beeinflussen!

Die genaue Vorgangsweise bei der aseptischen Milchprobenentnahme erklärt Ihnen Ihr Betreuungstierarzt gerne!